Войти Зарегистрироваться

21 Апрель 2005

Свиньи

РЕСПИРАТОРНЫЙ СИМПТОМО-КОМПЛЕКС У СВИНЕЙ

Этиология

Pеспираторные патогены, вовлекаемые в респираторный симптомо-комплекс у свиней (РСКС, PRDC), могут быть классифицированы как первичные и вторичные патогены.
Первичные патогены способны вызывать клиническое заболевание и повреждения сами по себе, тогда как вторичные вирусные патогены классифицируются как условно-патогеные и могут вызывать только субклиническое заболевание, если только у свиньи не ослаблена иммунная система или не имеет место инфекция, осложненная другими бактериями и вирусами.
Вторичные бактериальные патогены сами по себе не вызывают пневмонии или поражения системы защиты в легких, и для пролиферации и индуцирования пневмонии такими бактериями необходим ослабленный организм, у которого снижена способность освобождаться от бактерий.
(P.G. Halbur, Porcine Viral Respiratory Diseases, IPVS Congress, Birmingham, England, 1998. G.W. Stevenson, Bacterial Pneumonia in Swine, IPVS Congress, Birmingham, England, 1998.)

Первичные патогены

Патоген

Возраст на момент инфекции

Длительность сохранения материнских антител

Основной орган/клетка-мишень

Клинические признаки

Вирус свиного респираторно-репродуктивного синдрома (PRRSV)

В матке или после опороса

Ранее не болевшие свиньи в любом возрасте

Краткая, степень защиты умеренная

Альвеолярные макрофаги

Новорожденные: Тахипноэ, одышка, смерть

Поросята в ясельный период: повышенная смертность, медленный рост

Свиньи на конечном откорме: субклиническое течение

Свиноматки: аборты, преждевременный опорос, анорексия, лихорадка, изменение окраски вульвы и ушей

Mycoplasma hyopneumoniae (MH)

Возможна вертикальная передача, обычно после отъема от свиноматки

Краткая, степень защиты не абсолютная

Реснички эпителия в воздушных путях

Хронический непродуктивный кашель, грубая щетина, сниженный коэффициент конверсии корма

Вирус свиного гриппа (SIV)

Ранее не болевшие свиньи в любом возрасте

Заболевание наблюдается через 12-24 недели

Защита в течение 8-12 недель

Легкие

Судорожный «лающий» кашель, лихорадка, затрудненное дыхание, подавленное состояние

Свиной респираторный коронавирус (PRCV)

Среди эндемического поголовья, инфекция до возраста 20-26 недель

Инфекция может иметь место и при наличии материнских антител

Клетки респираторного тракта

Часто протекает субклинически, клинические признаки зависят от штамма, а также присутствия других микроорганизмов

Болезнь Ауески

В любом возрасте, чаще всего в период подращивания и откорма

Поросята-сосуны при иммунизированных свиноматках являются защищенными

ЦНС и легкие

У более молодых животных неврологические признаки.

У более взрослых свиней неврологические и респираторные признаки

При субклиническом заболевании: снижение привеса массы тела

Actinobacillus pleuropneumoniae

Восприимчивы в любом возрасте. Среди эндемического поголовья, инфекция до возраста 10-12 недель

Защита от клинического проявления заболевания в течение первых 6-8 недель

Альвеолярные макрофаги

Подострое заболевание: сильная лихорадка, цианоз, одышка, собачья поза, кровавая пена из ноздрей и рта, смерть.

Острое заболевание: лихорадка, тяжелые респираторные симптомы, смерть.

Хроническое заболевание: замедленный рост

Bordetella bronchiseptica

От свиноматки поросятам-сосунам. Инфекция может проявиться в любом возрасте

Материнские антитела обеспечивают защиту клинического проявления заболевания.

Слизистая оболочка носа.

Легкие

Пневмония у поросят в возрасте менее 1 недели.

Условно-патогеная. Является предрасполагающим этиологическим агентом к атрофическому риниту.

Вторичные/другие патогены

Патоген

Возраст на момент инфекции

Длительность сохранения материнских антител

Основной орган/клетка-мишень

Клинические признаки

Свиной цирковирус (PCV) (Может считаться первичным патогеном)

Инфицирование в возрасте 5-13 недель

Защита в течение более чем 8-9 недель

Лимфоидная ткань

Связанные с PMWS истощание, одышка, тахипноэ, желтушная бледность и диарея.

Врожденные судороги.

PDNS

Свиной цитомегаловирус (PCMV)

Поросята могут инфицироваться в матке и перед отъемом от свиноматки, а также при отъеме от свиноматки

У молодых свиней – макрофаги и эндотелиальные клетки.

В более старшем возрасте – слизистая носа, почечные канальны

Инфекция фатальна для новорожденных поросят.

У поросят старше 3 недель клинически латентная, если не осложнена другими патогенами

Pasteurella multocida

Вертикальная передача. Чаще горизонтальная передача в любом возрасте.

Легкие, носовая раковина

Причинный агент атрофического ринита.

Может вызывать плеврит, приводящий к кашлю и дыханию животом.

Хроническая форма: условный патоген при пневмонии, вызванной микоплазмой – кашель, выделения

Streptococcus suis

От свиноматки поросенку при опоросе или у поросят-сосунов. Также в любом возрасте из окружающей среды или от других свиней

ЦНС, респираторный тракт, системные инфекции

Лихорадка, невросимптомы (менингит), одышка, цианоз, истощание (пневмония), хромота (полиартрит).

Haemophilus parasuis

Передается вертикально обычно в течение первой недели. Также передается горизонтально после отъема от свиноматки

Легкие, серозные поверхности

Заболевание Глессера

Острая форма: повышенная температура, анорексия, одышка, боль, хромота, симптомы ЦНС, цианоз, смерть.

Хроническая форма: падение продуктивности

Mycoplasma hyorhinis

Передается вертикально от свиноматки или горизонтально после отъема от свиноматки

Легкие, серозные поверхности

Хромота.

Такие же, как при пневмонии

Actinomyces pyogenes

Вертикально от свиноматки

Нежизнеспособные или омертвевшие ткани

Гнойные раны и абсцессы

ЭТИОЛОГИЯ PRDC
Название заболевания
Свиной репродуктивно-респираторный синдром (PRRS) при респираторном симптомо-комплексе у свиней (PRDC)

Синонимы
PEARS

Введение
PRRS является новым заболеванием, о котором стало известно в течение последних 10 лет. Первоначально это заболевание вызывало массовые аборты, позднее проявляясь в респираторных, а также репродуктивных проблемах у свиней на конечном откорме.
В настоящее время PRRS стал одним из наиболее важных в экономическом плане патогенов в свиноводстве. Его воздействие на племенное поголовье является драматическим, хотя и преходящим. Экономические потери у свиней на конечном откорме являются весьма значительными.

Этиология
Вирус PRRS (PRRSV) является РНК-содержащим вирусом из семейства артивирусов (Artivirus).
Между европейскими и американскими изолятами существуют различия в генетическом и антигеном отношении, а также в вирулентности.

Эпидемиология
Передача происходит через оро-назальный контакт, сперму или иглу шприца.Обычно передача происходит при тесном контакте животных. Клинически нормальные свиньи могут быть персистирующими носителями вируса. Вирус передается вертикально in utero или после опороса. Горизонтальная передача вируса ранее не болевшим животным происходит более поздних стадиях производства. Материнские антитела обеспечивают некоторую защиту, однако она не бывает полной. Передача от одного поголовья другому может происходить путем завоза животных-носителей или через сперму.
Свиноматки, инфицированные в период 85-90 дней супоросности, могут родить инфицированных поросят. Уровень смертности в период до отъема от свиноматки очень высокий, и у поросят этого возраста отмечается респираторное заболевание в тяжелой форме. Такие поросята могут также рассеивать вирус на протяжении длительного периода времени.

Патогенез
Клетками-мишенями вируса PRRSV являются альвеолярные макрофаги. Из-за ослабления функция и лизиса легочных альвеолярных макрофагов респираторный тракт имеет сниженную способность защищаться от других патогенов.

Клинические признаки
Клинические признаки варьируют и зависят от иммунного статуса животных, штамма вируса, а также факторов, связанных с условиями содержания свиней на ферме. Эпидемии отмечаются среди поголовий, которые в иммунологическом плане не сталкивались ранее с вирусом, и в таких случаях восприимчивыми являются свиньи любого возраста. Клиническое заболевание является следствием острой виремии. Среди эндемически инфицированных поголовий клинические признаки главным образом наблюдаются у растущих свиней.

Племенные фермы:
• Преждевременный опорос.
• Мертворожденные и мумифицированные поросята.
• У свиноматок могут отмечаться анорексия, лихорадка, апатия, пневмония, агалактия, красное или синее окрашивание ушей и вульвы, подкожный отек и отек задних ног, задержка возврата в половую охоту и, в редких случаях, смерть.
• У новорожденных поросят: тахипноэ, одышка и почти поголовная гибель.
• У поросят в ясельный период отмечается повышенный уровень смертности и отставание в росте.

Свиньи на откорме:
Моноинфекция PRRS часто протекает субклинически. Однако, при этом вирус вызывает усиление восприимчивости к вторичным бактериальным и вирусным инфекциям. Степень тяжести клинического проявления заболевания у свиней на откорме зависит присутствия других инфекционных патогенов.

Клинический диагноз
PRRS следует подозревать, если клинические признаки респираторного заболевания присутствуют на всех стадиях производства как у поголовья с репродуктивными проблемами, так и у поголовья свиней на откорме сниженными показателями продуктивности. Диагноз не может базироваться только на клинических признаках, поскольку заболевания часто протекает субклинически.

Лабораторные тесты
На диагноз заболевания часто указывают клинические признаки, особенно, в случае вспышек репродуктивного синдрома и повреждения. Однако для постановки точного диагноза необходимо лабораторное обследование, которое также является полезным средством для выяснения характера циркуляции вируса на конкретной свиноферме, что представляет собой предварительное условие для разработки стратегии контроля на данной ферме.
Лабораторное обследование может быть применено для выявления присутствия антител, присутствия вируса или идентификации выделенного штамма.

Серология
Для обнаружения антител к PRRSV могут быть использованы различные методы. Цели серологического обследования различаются. Например, оно используется для выявления присутствия инфекции на ферме или идентификации возможной длительности присутствия инфекции на данной ферме. Поэтому для некоторых задач достаточным бывает получение качественных данных (положительный/отрицательный), а в других случаях необходимыми являются количественные или полуколичественные данные.
В следующее ниже таблице приводятся основные особенности тестов, обычно применяемых тестов:

IFT

ELISA

IPMA

Значение отсечения

= 16-20 = положительный

Различный (для IDEXX – S/P= 0,4 – положительный)

<10 = отрицательный,

= 160

Обнаружение антител после инъекции

11 – 12 месяцев

4 – 10 месяцев

11 – 12 месяцев

Штаммы

Родственные PRRSV

Американский и европейский штаммы

Родственные PRRSV

Имеются на рынке

Нет

Да

(IMG Chekit PRRS)

http://www.bommeli.com/ checkit/kits/ki prrs.htm

Нет

Другие

Небольшое количество сывороток

Быстрый

Большое количество сывороток

Небольшое количество сывороток


В литературе сообщается о том, что обнаружение антител с помощью метода IFT можно осуществить вплоть до 4-5 месяцев после инъекции, с помощью ELISA – от 4 до более, чем 10 месяцев, а IPMA - 11-12 месяцев после инъекции (Zimmerman et al, 1998). Очевидно, что антител к PRRSV, как правило, не сохраняются на протяжении всей жизни животного.

Метод ELISA часто используется для получения количественных результатов, но она не является наилучшей для точного титрования антител в сыворотке. Фактически соотношение S/P не линейно зависит от относительной концентрации антител, как это можно определить с помощью других методов (Mengeling and Lager, 2000).
Более подробно о серологии PRRSV можно ознакомиться в статье в конце данного обзора M. McCaw.

Вирологические методы
Выделение вируса лучше проводить у молодых животных. Вирус можно выделить из сыворотки, образцов бронхоальвеолярного лаважа (BAL), ткани легких и миндалин. Вирус можно выделить вплоть до 4 – 6 недель после инфекции у поросят-сосунов, поросят-отъемышей и поросят на подращивании, и вплоть до 1-2 недель после инфекции у свиноматок и молодых свинок.
Выбор образца зависит от стадии инфекции. Для проведения лабораторных анализов у животных с острой инфекцией лучше всего отбирать образцы сыворотки, легких и BAL. При хронической инфекции предпочтительными являются миндалины и BAL. В случае репродуктивных проблем вместо мумифицированных, абортированных или мертворожденных поросят, образцы следует отбирать у слабых новорожденных поросят, в идеальном случае до того, как они получат молозиво (Zimmerman et al, 1998).
Очень критическим моментом для выделения вируса является аккуратное обращение с образцами, поскольку вирус PRRSV быстро разрушается под действием тепла и различных уровней рН. Для получения аккуратных результатов тестов важно избегать нагревания и бактериального загрязнения образцов.
Существуют различия в способности клеточных субстратов поддерживать рост различных штаммов PRRSV. У европейских штаммов отмечается тенденция роста только на свиных альвеолярных макрофагах, тогда как американские штаммы нормально растут на постоянной культуре таких клеток, как MA 104 или MARC 145. Описаны исключения из этих правил, когда европейские штаммы изолируют только на постоянной культуре клеток, а американские штаммы способны расти только на альвеолярных макрофагах. По этой причине рекомендуется проводить выделение вируса на двух разных субстратах. Для обнаружения присутствия PRRSV используется целый ряд лабораторных методик, в частности, иммуногистохимический анализ (IHC), IFA и PCR (полимеразная цепная реакция, ПЦР). На результаты как IHC, так и IFA влияют навыки лаборанта, и они должны быть подтверждены выделением вируса. ПЦР может оказаться очень чувствительной методикой, и ее следует использовать, если выделение вируса затруднено. Методика считается самой чувствительной и специфической по сравнению с другими вирологическими методами анализа, в действительности эффективность теста зависит от использованного метода. Фактически, ПЦР может оказаться менее чувствительным, чем выделение вируса и дать неточные результаты из-за перекрестного загрязнения образцов либо в полевых условиях, либо в лаборатории.

Идентификация штамма
Точная идентификация изолятов штаммов в полевых условиях обычно является научной задачей. Благодаря недавно появившейся методике молекулярной биологии чаще стали проводить типирование. Описан целый ряд разных методик:
• Полиморфизм длины рестрикта (фрагмента ДНК, полученного после обработки её рестриктазой ) (RFLP)
• Моноклональные антитела
• Анализ последовательности оснований в генетическом материале вируса
Упомянутая последней методика становится в настоящее время самой популярной методикой. Не умаляя ее ценности для эпидемиологических исследований, важно понимать, что даже, если секвенирование способно обнаруживать незначительные различия в генетическом коде изолятов, в настоящее время еще не имеется связать эти различия с биологическими особенностями вируса. Таким образом, если наблюдаются различия в геноме, невозможно предсказать, являются ли они значимыми в плане вирулентности изолята, антигенного родства с другими штаммами, а также прогнозирования успеха или неудачи вакцин. Подробнее вопросы секвенирования вируса PRRS рассматриваются в статье Murtaugh and Faaberg (2001).

Посмертная диагностика
У новорожденных и ясельных поросят легкие имеют пятнистый желто-коричневый цвет, каучукоподобную консистенцию и не способны сжиматься.
Заметны увеличенные лимфатические узлы желто-коричневого цвета.

Гистопатология
Интерстициальная пневмония в молодых поросят, характеризующаяся септальной инфильтрацией мононуклеарных клеток, гипертрофией и гиперплазией пневмоцитов типа 2, а также альвеолярным экссудатом, состоящим из смеси мононуклеарных клеток и омертвевших остатков.

Организационные мероприятия с целью борьбы
Серологический мониторинг поголовья. В каждой группе свиней (племенное поголовье, поросята-отъемыши и т.д.) выбор случайным образом и тестирование животных поможет определить распространение инфекции и пути ее передачи. С целью мониторинга ремонтного поголовья следует определеить, является ли завозимое поголовье положительным по PRRS и разработать программу касательно завоза нового поголовья.

Профилактика
Вакцинация взрослых животное с применением модифицированной живой вакцины (вакцина Porcilis PRRS, Intervet). С целью установления контроля над PRRS у поголовья поросят-отъемышей необходимо применить два принципа: частичное уничтожение и вакцинацию. Следует предотвратить попадания инфицированных поросят в ясли и придерживаться в ясельных помещениях жесткой системы «пусто/занято».

ЭТИОЛОГИЯ PRDC
Название заболевания
Mycoplasma hyopneumoniae при PRDC

Синонимы
MH

Введение
Инфекция Mycoplasma hyopneumoniae вызывает мягкую форму хронической пневмонии.
Если инфекция осложнена попутной бактериальной инфекцией (P, multocida, B. bronchiseptica, S. suis, H. parasuis, A. pyogenes), то развивающееся заболевание известно под названием «энзоотическая пневмония».
Этиология
Эту микоплазму очень трудно выделить из-за ее привередливости в отношении среды для роста, а также частого присутствия в респираторном тракте M. hyorhinis.
Эпидемиология
Передача происходит в результате прямого контакта с инфицированным животным. Передача от свиноматки поросятам незначительная. Поражаются в основном поросята в возрасте старше 6 недель.

Патогенез
Период инкубации зависит от дозы инфекционного микроорганизма и обычно составляет 10 - 16 дней, возможна ситуация, когда период инкубации составляет 4-6 недель. Низкие дозы микоплазмы приводят в результате к субклиническим хроническим инфекциям.
Микоплазма прикрепляется к ресничкам в воздушных путях. Это вызывает сбивание ресничек, из выпадение и чрезмерную продукцию слизи. Тем самым нарушается функционирование мукоцилиарного аппарата, приводящего к снижению клиренса вдыхаемых частиц, что делает респираторный трак более восприимчивым к условно-патогеным инфекциям. ( E.L Thacker and B.J Thacker "MH and PRRS in the Finisher" American association of Swine practitioners, 1999). Mycoplasma hyopneumoniae также модулирует иммунный ответ организма хозяина. В отношении лимфоцитов она обладает как иммунодепрессивным, так и стимулирующим действием. Mycoplasma hyopneumoniae индуцирует продукцию провоспалительных цитокинов, включая IL-1 TNF и IL-6, которые являются ответственными за воспаление и хроническую природу пневмонии, вызываемой микоплазмой.
В большинстве случаев естественное течение заболевания осложняется условно-патогеными микроорганизмами.


Клинические признаки
При неосложненных инфекциях Mycoplasma hyopneumoniae вызывает хроническую пневмонию в мягкой форме с непродуктивным кашлем, грубой щетиной и снижением коэффициента потребления корма.
При вторичных бактериальных инфекциях клинические признаки более тяжелые. Усиливается кашель, отмечается затрудненное дыхание, повышенная температура и подавленное состояние.

Клинический диагноз
Клиническими симптомами, которые могут указывать на заболевание, являются хронический непродуктивный кашель, заторможенный рост, низкая смертность, медленное установление и повторяющиеся рецидивы заболевания.

Лабораторные тесты
IFA для обнаружения антигена в свежих образцах легких.
Серология - CF (могут иметь место перекрестные реакции с другими микоплазмами) и ELISA. Серология имеет ограничения для вакцинированного поголовья.

Посмертный диагноз
Катаральная бронхопневмония, поражающая краниовентральную долю легкого.
Острое заболевание – краниовентральная доля легкого отечная, бледно-серого цвета и без четких границ.
Подострое заболевание - краниовентральная доля легкого темно-красного цвета, с четкими границами.
Хроническое– мелкие разветвляющиеся трещины, состоящие из ателектатических (спавшихся) участков легких. Увеличены бронхиальные лимфатические узлы.
Гистопатология воздушных путей:
• Реснички расположены пучками или отсутствуют, а эпителий гиперпластичен.
• Гиперплазия лимфоидной ткани, связанной с бронхами.
• Фасции и подслизистый слой инфильтруются лимфоцитами и клетками плазмы.
• Просвет воздушных путей при прилегающих альвеол содержит слизь и умеренное количество нейтрофилов и макрофагов.
• При вторичных инфекциях нейтрофилы заполняют воздушные пути и альвеолы, могут иметь место бронхиостаз и нагноение могут иметь место бронхиостаз и нагноение.

Организационные мероприятия для борьбы

• Следует обеспечить оптимальную среду обитания.
• Строго придерживаться системы «пусто/занято».
• Лечение поросят-отъемышей в ранний период даст в итоге гнезда, свободные от М. hyopneumonia.
• Применение программ «SPF» (т.е. использование свиней, свободных от специфического патогена, в данном случае, микоплазмы).

Лечение
Противомикробная терапия может ослабить тяжесть заболевания.
Против Mycoplasma spp. эффективными являются (Энгемицин, Intervet).

Профилактика
Вакцинация (вакцина Porcilis BPM и Porcilis M, Intervet).

Этиология PRDC
Название заболевания
Вирус свиного гриппа при PRDC

Синонимы
SIV

Этиология
Свиной грипп вызывается вирусами гриппа типа А, РНК-содержащими вирусами из семейства Orthomyxoviridae. К заболеванию имеют отношение два подтипа: H1N1 и H3N2.
Эпидемиология
Отмечается тенденция к увеличению количества вариантов антигенов, перераспределения вариантов и перекрестная передача свиного гриппа другим видам.
Антигенные варианты свиного гриппа – Недавно сообщалось о дрейфе антигенов в Канаде и США, Это вызвало вспышки, связанные с вариантом H1N1.
Перераспределения вариантов свиного гриппа – Антигенный дрейф происходит, когда из-за перераспределения генов двух разных вирусов образуется совершенно новый вирус. Были идентифицированы вирусы, которые, как считается, являются результатом перераспределением генетического материала между вирусами свиного и лошадиного гриппа, вирусами гриппа человека и свиного гриппа, вирусами птичьего и свиного гриппа.
Перекрестная передача вируса гриппа свиньям – Имеются свидетельства о циркуляции вируса гриппа человека среди свиней в Европе и Англии. Вирус птичьего гриппа был выделен у свиней в Китае.

Патогенез
Пассивные антитела обеспечивают защиту в течение 8-12 недель, заболевание обычно наблюдается у поросят в возрасте 12-24 недели. На фермах, где животные ранее не контактировали с вирусом, клиническое заболевание может развиваться в более раннем возрасте.
Вирус распространяется с выделениями из носоглотки. Репликация вируса начинается в клетках эпителия верхних дыхательных путей.
По мере распространения инфекции на нижние дыхательные пути разрушаются реснички, повышается продукция слизи, отмечается экссудация нейтрофилов и макрофагов в воздушные пути, а также метаплазия эпителия воздушных путей.
Вирус распространяется на эпителий альвеол, эндотелий и макрофаги. Происходящее в результате нарушение мукоцилиарной системы и функции макрофагов предрасполагает к инфекции условно-патогенных бактерий.
Клинические признаки
Тяжесть заболевания зависит от штамма вируса, а также возраста и иммунного статуса свиней.
Классический свиной грипп характеризуется острым установлением респираторного заболевания с высоким уровнем заболеваемости и низкой смертностью.
Отмечаются одышка, затрудненное дыхание животом, судорожный «лающий» кашель, лихорадка и подавленное состояние.
Если нет осложнений, то выздоравливание наступает быстро Вт 2-6 дней.
Клинический диагноз
На заболевания указывают клинические признаки.

Лабораторные тесты
• Обнаружение антигена – иммуногистохимическое обследование срезов, фиксированных в формалине.
• Диагностические наборы с захватом антигена – для назальных и бронхиальных мазков.
• Флуоресценция антител в замороженных срезах.
• Выделение вируса – носовые мазки или ткань легких.
• Серология (следует использовать парные серологические тесты) - HI (используется чаще всего), ELISA, IFA
При интерпретации серологических тестов и тестов по обнаружению антигена следует принимать в расчет вариантность антигенов, перераспределения вариантов и перекрестная передача свиного гриппа другим видам.

Посмертный диагноз
При не осложненном свином гриппе поражения являются типичными для вирусной пневмонии, и они присутствуют в апикальной и краниальной долях легких.
Пораженные участки имеют фиолетовую окраску и плотные на ощупь, может присутствовать междольковый отек, а воздушные пути могут быть заполнены фиброзным экссудатом с примесью крови.
Видны увеличенные гиперемированые трахо-бронхиальные и медиастинальные лимфатические узлы, характеризующиеся:
• некротическим бронхитом
• бронхиолитом
• альвеолярной септальной инфильтрацией воспалительных клеток
• гипертрофия и гиперплазия пневмоцитов типа 2
• заполнение воздушных путей и полостей альвеол напоминающей белок жидкостью и смесью воспалительных клеток.
• Также заметно перибранхеальное скопление лейкоцитов.

Организационные мероприятия для борьбы
Жесткие меры биобезопасности предотвращают завоз вируса на свиноферму.
Профилактика
На рынке имеются инактивированная вакцина против свиного гриппа.

ЭТИОЛОГИЯ PRDC
Название заболевания
Болезни Ауески при PRDC

Синонимы
Псевдобешенство

Этиология
ДНК-содержащий вирус из семейства герпесвирусов.

Патогенез
Ороназальная инфекция наиболее часта встречается в полевых условиях.
Первичным местом репликации вируса являются эпителий носоглотки и миндалины. Из этих мест с лимфой вирус распространяется на периферические лимфатические узлы, где продолжается его репликация.
Вирус также распространяется по нервам в ЦНС. Более вирулентные штаммы распространяются по всему организму животного.
Клинические признаки
Клинические признаки зависят от дозы заражения, возраста свиньи, времени инфекции, а также штамма вируса.
Вирус нацелен на дыхательную и нервную системы. У более молодых поросят отмечаются в основном неврологические симптомы, а у более старших – неврологические и респираторные симптомы.
У инфицированных свиней отмечается сонливость, подавленное состояние, чиханье, кашель, одышка и выделения из носа. При субклиническом течении заболевания заметно только отставание в темпах роста.
Лабораторные тесты
• Анализ флуоресценции антител в образцах миндалин, ствола мозга, легких или трахеи.
• Выделение вируса из мозга, селезенки или миндалин.
• Обнаружение латентного вируса с помощью методики PCR для ганглий тройничного нерва.
• Серология (вакцины против псевдобешенства, ущербные по генам с последующими дифференциальными тестами ELISA; это позволяет провести различие между вакцинированными и инфицированными животными).

Посмертный диагноз
Крупных поражений обычно не отмечается.
Новорожденные поросята: милиарные очаги некроза могут быть заметны в селезенке и печени.
Растущие поросята: возможны фибронекротический ринит, тонзиллит, ларингит и трахеит. Присутствуют геморрагические пятна неправильной формы и многофокусные уплотнения в легких.
Наиболее явным микроскопическим повреждением является тяжелый лимфогистицитический энцефалит со скоплением лейкоцитов вокруг сосудов, глиоз, образование глиальных узлов, нейронофагия и некроз нейронов.
Микроскопические повреждения в легких характеризуются уплотнениями в легких и кровоизлияниями, утолщением стенок альвеол и многофокусным некрозом.
С очагами некроза могут быть связаны эозинофильные внутриядерные включения.

Профилактика
Вакцинация с помощью модифицированной живой вирусной вакцины (Porcilis Begonia, Intervet) или инактивированных вакцин (Porcilis Aujesky, Intervet).
Этиология PRDC
Название заболевания
Bordetella bronchiseptica при PRDC

Этиология
В. bronchiseptica является подвижной грамотрицательной палочкой или коккобациллой, которую обычно можно обнаружить в верхних дыхательных путях свиней, кошек и собак.

Эпидемиология
B. bronchiseptica лучше всего известна как предрасполагающий этиологическийагент атрофического ринита. В патогенезе атрофического ринита.эта бактерия колонизирует эпителий в носовой полости и секретирует цитокинин, создавая благоприятные условия для последующей колонизации Pasteurella multocida.
B. bronchiseptica является также первичным легочным патогеном у очень молодых поросят (менее одной неделя), вызывая некрогеморрагическую пневмонию. Из-за рубцевания легких выжившие поросята часто отстают в росте.
Патогенез
У свиней на откорме B. bronchiseptica условно-патогенной, и ее выделяют из повреждений при энзоотической пневмонии.

Лабораторные тесты
B. bronchiseptica может быть обнаружена в бактериальной культуре легких, пораженных пневмонией.

Посмертный диагноз
Посмертные повреждения сходны с повреждениями при бактериальной пневмонии.

Организационные мероприятия для борьбы
Надлежащие организационные мероприятия, такие же, как и для других респираторных заболеваний, снижают частоту проявления случаев вторичных инфекций B. bronchiseptica.

Профилактика
Вакцинация с помощью инактивированных вакцин (Porcilis AR-T, Porcilis AR-T DF и Porcilis Atrinord, Intervet).
Лечение
B. bronchiseptica чувствительна к тетрациклинам и фторохинолонам (Engemycin, Intervet). У поросят-сосунов используются потенцированные сульфонамиды (Borgal 24%, Intervet).
ЭТИОЛОГИЯ PRDC
Название заболевания
Actinobacillus pleuropneumonia при PRDC

Синонимы
APP

Этиология
Коккобацилла обнаруживается только у свиней.
Были описаны два биоварианта. Описано 14 капсулярных серотипов, между серотипами могут иметь место перекрестные реакции, однако они не являются полными. Вирулентность отличается в зависимости от серотипов и штаммов в пределах одного серотипа. Факторами, которые определяют вирулентность, являются: капсула, эндотоксин и экзотоксины, включая гемолизины и цитотоксины.

Патогенез
Инфекция происходит через ороназальный контакт. Первоначально бактерии колонизируют миндалины и прилипают к эпителию альвеол.
После фагоцитоза бактерии или после прилипания к альвеолярным макрофагам начинают продуцироваться токсины, которые являются потенциально токсичными для альвеолярных макрофагов, клеток эндотелия, эпителиальных клеток альвеол и эндотелиальных клеток капилляров стенки альвеол. Бактерия защищена от переваривания фагоцитами благодаря своей капсуле и, как представляется, устойчива к действию комплемента.
Вред, наносимый в ходе инфекции токсинами и цитокинами, в значительной степени является ответственным за развитие повреждений.
Клинические признаки
Клинические признаки зависят от возраста животных, их иммунного статуса, условий внешней среды и степени контакта с инфекционным агентом.
Молниеносное течение заболевания – Сильная лихорадка, апатия, анорексия, незначительная рвота и диарея. Развивается цианоз. В конечном итоге развивается одышка, животное сидит в позе собаки, после чего выделяется обильная кровавая пена ISO рта и ноздрей.
Острое заболевание – лихорадка, апатия, анорексия, покраснение кожи, тяжелые респираторные симптомы. В течение 24 часов резкое снижение кондиции. Может развиваться в подострую или хроническую форму заболевания.
Хроническое заболевание – свиньи выживают с последующим рубцеванием подвергшихся некрозу участков легких, хронический перемежающийся кашель и медленный рост.

Клинический диагноз
На заболевание могут указывать клинические признаки, однако для постановки диагноза требуется подтверждение с помощью лабораторных анализов и посмертного вскрытия.

Лабораторные тесты

Культивирование бактерий.

Посмертный диагноз
Заметна двухсторонняя пневмония с вовлечением кардиальной, апикальных и диафрагменных долей легких.
Молниеносные случаи – фиброгеморрагическая пневмония (легкие - темно-красного цвета и уплотнены) с незначительным плевритом, а трахея и бронхи заполнены пеной с вкраплениями крови.
Острое заболевание – становится очевидным фибринозный плеврит.

По мере хронизации заболевания фибринозный плеврит превращается в фиброзный плеврит и происходит слипание. Легкие становятся более светлыми, оставаясь твердыми в некоторых местах. Повреждения сжимаются в размере, превращаясь в узелки, напоминающие абсцессы. Микроскопические повреждения довольно симптоматичны для диагноза. Плевра покрыта фибрином, который заполняет альвеолы, раздувает междольковые стенки и образует тромбы в лимфатических протоках. Значительные участки легких омертвевают, инфильтрованы и окружены агрегатами текущих разрушенных нейтрофилов. В хронических случаях вторичная бактериальная инфекция делает микроскопические повреждения менее диагностическими.

Организационные мероприятия для борьбы
1. На свинофермы, свободные от этого патогена, следует завозить поголовье только с ферм с таким же статусом. Вновь завезенных животных следует подвергать карантину.
2. Выявить периоды риска на основе посмертного вскрытия, серологического тестирования и клинического обследования и спланировать лечение в стратегическом плане.
3. Эффективными являются общие принципы борьбы с респираторным заболеванием.

Профилактика
На рынке имеется инактивированная вакцина (Porcilis APP, Intervet).

Лечение
Парентеральное лечение с помощью антибиотиков в начальных стадиях заболевания способствует снижению уровня смертности.
Эффективными являются следующие противомикробные средства: пенициллины, цефалоспорины, хлорамфеникол, котримоксазол, окситетрациклины (Albipen, Borgal24%, Depocillin, Depomycin, Duplocillin, Engemycin,Neopen, Oxigel (Intervet)).
Этиология PRDC
Название заболевания
Свиной респираторный коронавирус при PRDC

Синонимы
PRCV

Этиология
РНК-содержащий вирус из семейства коронавирусов (Coronaviridae). Близкородственный вирусу инфекционного гастроэнтерита (TGEV).

Эпидемиология
В эндемических инфицированных endemically infected herds piglets become naturally infected at 5-8
weeks of age.( Patrick G. Halbur, "Porcine Viral Respiratory Diseases",
Proceedings of the 15th IPVS Congress, 5-9 July 1998).

Патогенез
Первоначально вирус реплицируется в эпителии верхних дыхательных путей, затем вторгается в эпителий бронхов и распространяется на перибронхиальный и альвеолярный регионы. PRCV инфицирует макрофаги, ослабляя функцию альвеолярных макрофагов в легких. Виремия начинается после первичной инфекции, и вирус распространяется на паренхиматозные органы и лимфатические узлы.
Клинические признаки
Животные могут быть сероположительными по PRCV без проявления клинических признаков. Экспериментальное заражение приводит в результате к различной степени анорексии, апатии, повышенной температуре, одышке, тахипноэ, потере веса и смерти. Имеются данные в пользу того. что существует синергический эффект с другими вирусными респираторными патогенами.
Клинический диагноз
Инфекция часто протекает субклинически.

Лабораторные тесты
• Наличие часто встречаемого респираторного заболевания и высокий уровень содержания антител к TGEV в методе SVN при отсутствии проблем, связанных с желудком. С помощью конкурентного блокировочного метода ELISA можно обнаружить различия между антителами к TGE и PRCV на уровне всего поголовья.
• Обнаружение антигена – флуоресценция антител или иммуногистохимический анализ в начале заболевания.
• Выделение вируса – из назальных мазков при острых инфекциях.

Посмертный диагноз
Повреждения в легких могут варьировать от скрытых до тяжелых, многофокусных и пятнистых желто-коричневого цвета или уплотнения легких.
Микроскопические повреждения
• Бронхоинтерстициальная пневмония, характеризующаяся некрозом, метаплазией и пролиферацией бронхиального эпителия.
• Альвеолярная септальная инфильтрация мононуклеарных клеток.
• Гипертрофия и гиперплазия пневмоцитов типа 2.
• Альвеолярный экссудат, состоящий из смеси мононуклеарных клеток и погибших пневмоцитов.
ЭТИОЛОГИЯ PRDC
Название заболевания
Свиной цирковирус при PRDC и PMWS

Синонимы
PCV2

Введение
Мультисистемный синдром истощения после отъема от свиноматки - (PMWS) впервые был диагностирован в Канаде в 1991. В Европе первой страной, которая столкнулась с проблемами, связанными с PMWS, была Франция. В настоящее время этот синдром является причиной значительных экономических потерь по всему миру. PMWS проявляется у свиней в возрасте 7-15 недель. Этот синдром характеризуется истощением, повышенной температурой, одышкой и увеличенными лимфатическими узлами. Могут также отмечаться бледность, желтуха и диарея.
У пораженных поросят отмечается высокий уровень смертности. При посмертном вскрытии повреждения можно найти в самых разных органах.
В настоящее время причиной PMWS считаются свиной цирковирус 2 (PCV2) в сочетании с некоторой формой стимуляции иммунной системы свиньи. С PMWS могут быть также связаны свиной парвовирус и вирус свиного репродуктивного и респираторного синдрома.
Вирус PCV1 имеет широкое распространение, и считается не патогеным, но может иметь отношение к врожденным судорогам.

Этиология
Свиные цирковирусы являются маленькими (17 нм) вирусами без оболочки икосаэдральной формы, содержащими геном в виде одной цепи скрученной ДНК в форме кольца. Эти вирусы можно отнести к семейству Сirciviridae.
В настоящее время известно 2 штамма этого вируса: PCV1 и PCV2. Сравнение нуклеотидной последовательности генома обоих штаммов выявило существенное различие. Общепринятым является мнение, что штамм PCV2 является патогеным для свиней, а штамм PCV1 не является патогеным.
Вирус состоит из генов, называемых «открытыми рамками считывания» (ORF). Известно, что к репликации вируса имеет отношение ORF1, и она указывает на определенную степень гомологии с растительными цирковирусами и цирковирусами, поражающими птиц.
Среди других синдромов, с которыми связаны цирковирусы, можно отметить инфекционные врожденны судороги, синдром свиного дерматита и нефропатии (PDNS), синдром репродуктивной недостаточности и подострая/хроническая пролиферативная и некротическая пневмония (PNP).
Сопутствующие факторы
Степень тяжести заболевания могут обострить факторы внешней среды, например, сквозняки, скученность, плохое качество воздуха, смешивание животных разных возрастных групп, а также другие стрессовые факторы.
Согласно имеющимся в настоящее время данным, представляется, что для запуска клинического проявления заболевания у положительных по PCV2 свиней требуется некого рода стимуляция иммунной системы. При современной системе свиноводства существует много таких факторов, стимулирующих иммунную систему молодых поросят.

Такими случаями могут быть:
1. Одновременная инфекция PRRSV и свиного парвовируса (PPV). Экспериментальное заражение свиней вирусом PCV2 и одним из упомянутых выше вирусов приводило к проявлению повреждений, характерных для PMWS. Представляется, что эти вирусы способны потенцировать репликацию PCV2.
2. Смешивание поросят из разных гнезд вызывает стресс у поросят и оставляет их незащищенным в отношении других инфекционных агентов.
3. Вакцинация в раннем возрасте.

Эпидемиология
Антитела к PCV1 и PCV2 в сыворотке обнаруживаются в самых разных региона по всему миру. Представляется, что все типы ферм поражаются путем передачи вируса от свиней, содержащихся в подсобных хозяйствах, в к свиньям «SPF» («свободный от специфического патогена»). До настоящего времени опубликовано мало данных касательно серораспространения, характера выделения, диапазона видов организма-хозяина и характера рассеивания PCV2. Сероконверсия у поросят в отношении PCV2 обычно происходит через 3-4 недели после отъема от свиноматки. На основании этого, был сделан вывод о том, что поросята контактирую с вирусом в возрасте 11-13 недель, когда их перемещают в блоки для откорма.
Было продемонстрировано, что через 13-14 дней после экспериментального заражения однодневных поросят рассеивание PCV1 происходит с калом, а через 31 день – со слюной после инфекции (только в это время отбирали образец на предмет присутствия PCV2). Представляется, что вирус передается в основном горизонтально. Имеются сведения, что вирус может передаваться вертикально (M. Pensaert, Конгресс по PMWS в St.Malo). Хотя свиньи, у которых диагностирован PMWS, всегда оказываются положительными по PCV2, не у всех положительных по PCV2 свиней развивается PMWS. Причина такого феномена остается невыясненной. Только недавно PMWS был обнаружен на свинофермах, на которых свиньи были положительными PCV2 в прошлом. Представляется, что PMWS некоим образом связан с регионами: в некоторых странах имеется большое количество свиноферм с положительным по PCV2 поголовьем свиней при очень незначительном количестве случаев заболевания PMWS.

Патогенез
Патогенез этого заболевания еще не установлен в полной мере. Естественная инфекция происходит ороназальным путем. Была продемонстрирована определенная «предрасположенность» к моноцитам, макрофагам и гистиоцитам. Это может указывать на то, что патогенез связан с некоторым нарушением функционирования иммунной системы. Иммуносупрессивный эффект является общим для всех других представителей семейства Circoviridae. При PMWS в эпителии самых разных органов в связи с гистологическими повреждениями обнаруживаются антиген и/или нуклеиновая кислота вируса PCV2. Хотя PMWS не проявляется у отрицательных по PCV2 свиней, не у каждой свиньи, инфицированной вирусом PCV2, развивается PMWS.

Клинические признаки
У поросят клинические признаки развиваются в возрасте 7-15 недель. Инкубационный период заболевания точно не установлен. Сначала проявляются такие симптомы, как гипотония, вялость и апатия. Может иметь место анорексия, но она не является типичной для этого заболевания.
По мере прогрессирования заболевания становится заметным истощение мышц, а также одышка и заметная общая лимфаденопатия. Среди других признаков можно отметить диарею, бледность или желтуху, повышение температуры, кашель, язвы желудка, менингит и внезапная смерть.
Большинство животных погибает в течение 48-72 часов после установления клинических признаков. Некоторые животные выздоравливают через несколько недель. Выздоровления не происходит после установления клинических признаков тяжелой степени.

При гистологическом анализе заметно, что во всех лимфоидных тканях рано происходит потеря фолликулов В-клеток, зона Т-клеток расширена с инфильтрацией гистиоцитов и многоядерных синцитиальных клеток. После этого обнаруживаются внутриплазматические базофильные включения. Большое количество антигена PCV2 обнаруживается в клетках моноцитов из рода макрофагов.

При PMWS часто встречается пневмония. Легкие диффузно не сжатые, про прощупывании плотные и напоминают каучук. Поверхность среза крапчатая, и крапчатость по интенсивности от диффузной до очень существенной.

Легкие свиньи, пораженной PMWS

В гистологическом плане могут быть признаки от многофокусной лимфогистиоцитарной до диссеминированной грануломатозной междольковой пневмонии, часто с инфильтрацией гигантских клеток. Имеет место различной степени некроз и «облысение» эпителия воздушных путей с прогрессированием до бронхиолитической облитерации на терминальных стадиях. Внутри ядер и цитоплазмы мононуклеарных фагоцитов обнаруживается антиген вируса PCV2.
В случаях желтухи окраска печени может измениться до желто-оранжевой или стать заметно атрофированной с явным присутствием соединительной ткани.
Для гистологии печени на ранних стадиях характерны повреждения с лимфогистиоцитарной инфильтрацией портальных участков и некроз отдельных гепатоцитов. На терминальной стадии заболевания печени в большинстве случаев долей печени не содержится больше гепатоцитов, синусоиды и строма портального участка переполнены, обнаруживаются редкие сильно разбухшие клетки печени. В клетках обнаруживается антиген PCV2. В ряде случаев отмечаются продуктов в почках. Почки увеличены в размерах и испещрены белыми точками.

При гистологии почек заметна связанная с васкулитом лимфогистиоцитарная и эозинофильная инфильтрация в области почечной лоханки. Повреждения в кортикальном слое: от многоочаговой атрофии канальцев и регенерации до обширного некроза канальцев и отека с интерстициальным нефритом. В пораженных клетках эпителия канальцев и мононуклеарных фагоцитах обнаруживается антиген вируса PCV. Среди других повреждений можно отметить истощение мышц, бледность, тифлит и колит, а также изъязвление желудка.

Дополнительная информация
Синдром свиного дерматита и нефропатии (PDNS). Впервые этот синдром был описан в Англии в 1993 г., и в настоящее время описан по всему миру. Это сосудистое заболевания, поражающее поросят-отъемышей и свиней на откорме и конечном откорме. В патогенез этого заболевания вовлекаются PCV2 и/или PRRSV. У животных отмечаются геморрагические повреждения кожи. У тяжело пораженных свиней проявляется апатия, анорексия, потеря веса и одышка. При вскрытии на коже заметны кровоизлияния, легкие уплотнены, а почки увеличены и белого цвета с точечными кровоизлияниями. При гистологии основными повреждениями являются тяжелый системный некротический васкулит и тяжелый гломерулонефрит. В клетках, связанных с повреждениями, обнаруживаются антиген/нуклеиновая кислота вируса PCV2. PDNS имеет важное значение для дифференциальной диагностики классической чумы свиней.

Инфекционный врожденный тремор. Клинические признаки варьируют от мягкой до тяжелой степени, так же, как и количество поросят в гнезде, поражаемых заболеванием. Пораженные поросята могут погибнуть из-за неспособности сосать свиноматку. Как правило, поросята выздоравливают в течение 3 недель. Основным сообщаемым повреждением является задержка отложения миелина в спинном мозгу.

Другие синдромы: Антиген PCV2 был также выделен из повреждений, связанных с пролиферирующей и некротической пневмонией (PNP), а также синдромом абортов и гибели свиноматок.

Организационные мероприятия с целью борьбы
Вирус PCV очень устойчив к инактивации с помощью обычно применяемых дезинфицирующих и моющих средств. Вспышки могут иметь места на свинофермах, где придерживаются жестких мер биобезопасности. Борьба с сопутствующими инфекциями может внести вклад в ослабление симптомов. Наилучшие результаты в борьбе с этим заболеванием дает быстрая диагностика и удаление заболевших животных с фермы с последующим внедрением ряда организационных мер.
В приведенной ниже таблице приводятся 20 основных рекомендаций касательно организации системы хозяйствования и условий содержания животных на ферме, на которых свиньи тяжело поражены PMWS (F.J. Madec)

1.

Гигиена (помещения): в отношении помещений применяется жесткая система «пусто/занято» (очистка + дезинфекция + промежуток времени между 2 партиями животных)

2.

Гигиена (животные): мытье + шампунь + противопаразитарная обработка до поступления

3

Подсадка к другой свиноматке: ограничение до «необходимых случаев», в течение первых 24 часов после рождения

4.

Небольшие загоны (n<13), жесткие перегородки

5.

Гигиена (помещения): в отношении помещений применяется жесткая система «пусто/занято» (очистка + дезинфекция + промежуток времени между 2 партиями животных)

6.

Плотность заселения не более 3 свиней/м2

7.

Пространство у кормушки (сухое кормление): + 7 см на каждого поросенка

8.

Качество воздуха: приблизительно: NH3 - < 10 ppm; CO2 - < 1,15%; относительная влажность <80%

9.

Приемлемая и постоянная температура

пропущено

пропущено

Сектор свиней на откорме

12.

Гигиена (помещения): в отношении помещений применяется жесткая система «пусто/занято» (очистка + дезинфекция + промежуток времени между 2 партиями животных)

13.

Не смешивать свиней из загонов для поросят-отъемышей

14.

Не смешивать свиней из разных партий

15.

Плотность заселения не менее 0,75 м2/свинья

16.

Адекватные температура с качество воздуха

Другие

17.

Подходящая программа вакцинации

18.

Адекватное передвижение в пределах помещения

19.

Строгая гигиена в ходе вмешательств (кастрация, инъекции)

20.

Быстрое удаление больных свиней


Профилактика
В настоящее время еще не имеется вакцины против этого вируса.
ЭТИОЛОГИЯ PRDC: ВТОРИЧНЫЕ/ДРУГИЕ ПАТОГЕНЫ
Название заболевания
Свиной цитомегаловирус при PRDC

Синонимы
PCMV

Этиология
ДНК-содержащий вирус. Представитель семейства Herpesviridae.

Патогенез
У поросят в возрасте менее 2 недель вирус реплицируется в макрофагах и эндотелиальных клетках по всему организму. У свиней старше 2 недель включения вируса в основном встречаются в эпителиальных клетках в слизистой носа и почечных канальцев.

Клинические признаки
Клинические признаки зависят от возраста, иммунного статуса и иммунитета свиноматки. В основном вызывает скрытую (инаппарантную) инфекцию.
Поросята в возрасте менее 10 дней: могут отмечаться чиханье, густой белый экссудат из носа, неспособность питаться при свиноматке, парез и смерть.
У поросят старше 2 недель могут проявиться слизисто-гнойный экссудат, анемия и остановка роста; уровень заболеваемости и смертности незначительный.

Посмертный диагноз
Генерализованное заболевание у новорожденных поросят
• Могут иметь место повсеместные точечные кровоизлияния, особенно в почках и легких, междольковый легочный отек, анасарка (общий отёк), а также излияния в полости организма.
• Базофильные включения могут наблюдаться в макрофагах и эндотелиальных клетках по всему организму.
• Интерстициальная пневмония характеризуется повышенной клеточностью ( насыщенностью клетками) перегородок альвеол, а также сжатие и отек альвеол.
Более старые свиньи
• Отмечается слизисто-гнойные выделения.
• Некротический гнойный ринит из-за вторичных патогенов.
• Базофильные включения могут наблюдаться в подслизистых железах и носовых раковинах.
Однозначный диагноз основывается на обнаружении внутриядерных включений.
Организационные мероприятия с целью борьбы
Надлежащие организационные мероприятия способствуют контролю над клиническими симптомами у животных на эндемически инфицированных свинофермах. Если завозится новое поголовье, следует принять во внимание серологический статус ввозимых животных, поскольку может быть занесена новая инфекция или стимулироваться присутствующая на свиноферме латентная инфекция.
ЭТИОЛОГИЯ PRDC: ВТОРИЧНЫЕ/ДРУГИЕ ПАТОГЕНЫ
Название заболевания
Streptococcus suis при PRDC

Введение
Некоторые штаммы S. suis связывают свиней на откорме вспышками менингита, артрита, септицемии и пневмонии.

Этиология
S. suis является альфа-гемолитическим грамположительным стрептококком.

Эпидемиология
У свиней-носителей стрептококк колонизирует миндалины и носовую полость. В большинстве случаев поросята инфицируются к достижению возраста 2 недели от своих матерей.
Горизонтальная передача также может происходить, а окружающая среда может выступать в качестве резервуара инфекции.
S. suis был выделен у человека, овцы, козы, лошади и КРС.

Патогенез
S. suis обычно выделяют при случаях энзоотической пневмонии в качестве попутной инфекции с другими патогенами.

Лабораторные тесты
Диагноз зависит от выделения бактерии.

Посмертный диагноз
Крупные и микроскопические повреждения являются типичными для гнойной бронхопневмонии и сходны с повреждениями, типичными для энзоотической пневмонии; они не отличаются от повреждений, вызванных инфекцией других условно-патогенных микроорганизмов.

Профилактика
Вакцинация с помощью инактивированной бактериальной вакцины (Porcilis strepsuis, Intervet) способствует контролю над клиническим заболеванием.

Лечение
Используемые противомикробные средства зависят типа присутствующей инфекции, восприимчивости микроорганизма, а также метода его применения. В случаях менингита одновременно с противомикробными можно применить противовоспалительные средства. Можно использовать следующие противомикробные препараты : ампициллин, амоксицилин, сульфонамиды, цефалоспорины (Albipen, Borgal 24%, Depocillin, Depomycin,
Duplocillin, Engemycin, Neopen (Intervet)).

ЭТИОЛОГИЯ PRDC: ВТОРИЧНЫЕ/ДРУГИЕ ПАТОГЕНЫ

Название заболевания
Pasteurella multocida при PRDC

Введение
Бактерию Pasteurella multocida часто выделяют у здоровых свиней.

Этиология
Pasteurella multocida является неподвижной грамотрицательной палочкой или коккобациллой.

Эпидемиология
Pasteurella multocida является важным первичным патогеном в комплексе атрофического ринита. Она инфицирует легкие в качестве вторичного патогена и является наиболее частой бактерией, выделяемой у свиней с энзоотической пневмонией.

Лабораторные тесты
Диагноз зависит от выделения бактерии.

Посмертный диагноз
Крупные и микроскопические повреждения являются типичными для гнойной бронхопневмонии и сходны с повреждениями, типичными для энзоотической пневмонии; они не отличаются от повреждений, вызванных инфекцией других условно-патогенных микроорганизмов.

Организационные мероприятия
Надлежащие условия содержания животных снижают частоту случаев и степень тяжести клинического атрофического ринита.

Профилактика
Вакцинация с применением инактивированных вакцин (Porcilis AR-t, Porcilis AR-T DF и Porcilis Atrinord, Intervet).

Лечение
Который посредством стратегического применения таких антибиотиков, как пенициллин или стрептомицин, а также потенцированных сульфонамидов, окситетрациклинов (Albipen, Borgal 24%, Depocillin, Depomycin, Duplocillin, Engemycin, Neopen, Oxigel (Intervet)).

ЭТИОЛОГИЯ PRDC: ВТОРИЧНЫЕ/ДРУГИЕ ПАТОГЕНЫ
Название заболевания
Haemophilus parasuis при PRDC

Введение
Бактерия Haemophilus parasuis является обычным симбионтом в носовой полости свиней.
Она вызывает болезнь Глессера у поросят-отъемышей и растущих свиней. Болезнь Глессера представляет собой септицемию, для которой характерны фиброзный полисеросит, артрит и менингит.
Haemophilus parasuis также часто выделяют из легких животных с повреждениями, характерными для энзоотической пневмонии.

Этиология
H. parasuis является плеоморфной бактерией в диапазоне от одиночных коккобацилл до длинных разветвленных цепей бактерий. Были выделены разные сероварианты этой бактерии.

Лабораторные тесты
Для диагноза необходимо культивирование ткани пораженных легких.

Посмертный диагноз
Крупные и микроскопические повреждения являются типичными для гнойной бронхопневмонии и сходны с повреждениями, типичными для энзоотической пневмонии; они не отличаются от повреждений, вызванных инфекцией других условно-патогенных микроорганизмов.

Профилактика
Вакцинация с помощь Porcilis Glasser, Intervet.

Лечение
Высокие дозы парентеральных антибиотиков, потенцированных сульфонамидов, ампициллин, цефалоспорины и окситетрациклины (Albipen, Borgal 24%, Depocillin, Depomycin, Duplocillin,Engemycin, Neopen (intervet)).

ЭТИОЛОГИЯ PRDC: ВТОРИЧНЫЕ/ДРУГИЕ ПАТОГЕНЫ

Название заболевания
Mycoplasma hyorhinus при PRDC

Epidemiology
Mycoplasma hyorhinus является наиболее частой причиной септицемии у поросят в возрасте 3-10 недель, для которой характерны фиброзный полисеросит и артрит. Некоторые исследования указывают на то, что Mycoplasma hyorhinus может быть первичным легочным патогеном низкой вирулентности. Чаще всего эта микоплазма считается вторичным бактериальным патогеном, поскольку ее выделяют из легких, пораженных энзоотической пневмонией, где этот патоген может вызывать плеврит.

Посмертный диагноз
Крупные и микроскопические повреждения являются типичными для гнойной бронхопневмонии и сходны с повреждениями, типичными для энзоотической пневмонии; они не отличаются от повреждений, вызванных инфекцией других условно-патогенных микроорганизмов.

Лечение
Может оказаться полезным лечение с применением тилозина, линкомицина или окситетрациклина (Engemycin, Intervet) или их сочетанием с кортикоидами (Dexafort, Intervet).

ЭТИОЛОГИЯ PRDC: ВТОРИЧНЫЕ/ДРУГИЕ ПАТОГЕНЫ

Название заболевания
Actinomyces pyogenes при PRDC

Синонимы


McCow 2001, Семинар по диагностики PRRS; 32-я конференция AASV.

В настоящее время на рынке имеется много современных методик для диагностики инфекции PRRSV на уровне отдельного животного, и эти методики часто дают четкие и днозначные результаты. Однако, большая часть наших усилий по мониторингу и установлению контроля над PRRS на уровне целой фермы все еще базируется на серологических обследованиях из-за легкости отбора образцов, затрат на проведение анализа, а также быстроты получения результатов. К сожалению, серология PRRSV, особенно, после применения метода ELISA часто дает результаты, которые в лучшем случае не совсем ясные, если не сомнительные, в частности, у вакцинированных животных. В данной статье мы попытались осветить известные достоинства метода ELISA, а также прояснить, как мы часто используем (или неправильно используем) этот метод в полевых условиях. Мы предлагаем свои идеи касательно повышения надежности данных и степени надежности принятого решения после применения ELISA и остаемся открытыми для дискуссии в этой области.

Результаты метода ELISA для PRRSV используются для: I) диагностики заболевания, 2) мониторинга распространения инфекции, 3) рассуждений касательно иммунного статуса, 4) попыток установить или подтвердить, что животные являются свободными от заболевания и 5) мониторинга эффективности изменений в плане условий содержания животных на ферме.

В лучшем случае серология обеспечивает только ретроспективную диагностику инфекции PRRSV. В зависимости от использованного метода (ELISA или SN) сероконверсия обнаруживается от нескольких дней до нескольких недель после инфекции, соответственно. Однодневные образцы могут сделать возможным диагноз, если ожидалось что группа животных является отрицательным по PRRSV, как, например, раздельные группы стадий производства, либо речь идет о свободном от PRRSV племенном поголовьи. В противном случае или, если возникает вопрос о том, как давно данная группа контактировала с вирусом или заболела, для диагностики требуются спаренные образцы. Для того чтобы принять решение касательно диагноза, должно пройти не менее 2 недель между датами отбора образцов. Интерпретация полученных с помощью ELISA соотношений S/P (отношение значения оптической плотности образца к значению оптической плотности стандартного контроля) для парных образцов является менее однозначной, чем для методов SN (нейтрализации сыворотки) или IFA (иммунофлуоресцентных антител). В метода SN и IFA используют титрование (тестируются многократные серийные разведения образца сыворотки) для достижения линейной количественной конечной точки для концентрации антител к PRRSV. Напротив, при проведении анализа с помощью ELISA используется однократное разведение и получают результаты свиней на откорме скорее сигмоидальной, чем линейной количественной зависимостью. Другими словами, в средней части кривой значения отношения S/P меняются почти линейно в зависимости от концентрации специфических к PRRSV антител. Однако, на конечных отрезках кривой имеет место очень незначительное изменение отношения S/P, тогда как концентрация антител к PRRSV меняется очень значительно. Поэтому выводы, базирующиеся на абсолютных изменениях уровня антител не всегда может быть сделан на основе наблюдаемых различий отношений S/P у разных образцов. Окончательный вывод о вовлечении вируса PRRSV в процесс заболевания может быть сделан поредством выделения вируса, методики ПЦР на сыворотке, метода IFA на замороженных или иммуногистохимии (IHC) на фиксированных тканях.

Напротив, метод ELISA также используют для мониторинга (подтверждение является затрудненным, о чем будет говориться ниже) того, получают ли ремонтных молодых свинок свободными от PRRSV или, что вирус не распространяется от более старых инфицированных животных к более молодым, ранее не инфицированным свиньям. Классическим примером такого применения является проект «Upland Pork», о котором на прошлогодней конференции сообщили Др. Steve Henry et al. В положительных по ELISA группах животных уровень и, возможно, величина сероконверсии среди разных подгрупп (количество опоросов, просихождение поголовья, искусственное осеменение по сравнению с естественной случкой) свиноматок могли оказаться полезными в эпидемиологическом плане для определения возможных способов интродукции новых штаммов PRRSV на уже инфицированные свинофермы. У восприимчивых групп следует ожидать заметно повышенного ("мнемонического типа") иммунного ответа, тогда как у потенциальных «носителей» такого ответа можно не ожидать.

Сероконверсия используется в качестве косвенного мониторинга установления защитного иммуннитета на разных стадиях производственного процесса на ферме. Исходят из того, что у свободных от PRRSV молодых ремонтных свинок, у которых происходит сероконверсия после вакцинации в изоляторе или на этапе акклиматизации, развивается защитный иммунитет. Если иммунизация является успешной, то сероконверсия должна произойти у всех свинок в каждой группе. Представляется, что такой результат является желательным после клинической вспышки PRRS среди вакцинированного или ранее инфицированного поголовья, что в значительной степени напоменает модель «TGE». Животные среди поголовья становятся стабильными и достигают сероотрицательного статуса тем быстрее и остаются клинически нормальными тем дольше, чем более высокие результаты серораспространенности после вспышки.

Серология широко используется для определения того, являются ли группы животных свободными от вируса PRRSV. Такой вывод очень трудно сделать с высокой степенью уверености. Либо необходимо протестировать большое количество животных (производственные группы молодых свинок) и использовать многократные повторные тестировнания в течение длительного периода времени (племенные хряки), либо одновременное тестирование животных на всех производственных стадиях на свиноферме, которая рассматривается в качестве нового источника племенного поголовья.

К сожалению, мониторинг распространения PRRSV среди вакцинированных или ранее инфицированных групп животных посредством серологических методов является более трудным делом, зависящим от оценки изменений отношения S/P, чем просто определение того, являются группы отрицательными или положительными. До того, как успешно реализовать программу депопуляции яслей, нам надо определить, продолжает ли вирус циркулировать среди свиноматок (нестабильное племенное поголовье) и, как следствие, у рожденных ими поросят. Неободим также метод, чтобы показать свиноводам эффективность внедренных изменений методов организации содержания животное на ферме (акклиматизация и изоляция или проведение вакцинации) в плане контролирования циркуляии вируса в пределах иммунизированных групп свиней. Поскольку еще не имеется маркерной вакцины для PRRSV, такие целей очень трудно достигнуть, и для этого требуются новаторские и, часто, косвенные средства.

С помощью ELISA антител к PRRSV обнаруживаются уже через несколько дней после первоначальной инфекции или вакцинации. Эти антитела не являются нейтрализующими, поскольку нейтрализующие антитела обнаруживаются только через несколько недель после инфекции. Любопытно, что обнаруживаемый с помощью ELISA иммунный ответ на PRRSV снижается до «отрицательных» уровней примерно через 4 – 6 месяцев после первоначального пика. Означает ли это, что свиноматки становятся сероотрицательными через несколько месяцев после вспышки, возможно теряя свой иммунитет и вновь становясь восприичивыми? Напротив, при применении метода SN антител к PRRSV все еще обнаруживаются даже через один год после первоначального инфицирования. Таким обраом, присутствие антител к PRRSV, обнаруживаемых с помощью ELISA, может указывать на «недавнюю» инъекцию, а эти животные либо являются иммунными, либо у них быстро развивается иммунитет к инфицируемому штамму вируса. Однако отсутствие антител к PRRSV вероятно является плохим прогностическом фактором касательно того, остаются ли животные все еще иммунными или становятся восприимчивыми. Тот факт, что многократно вакцинированные свиноматки являются сероотрицательными, если судить по результатам ELISA, и не демонстрируют мнемонического ответа в виде антител, может парадоксальным образом отражать великолепный иммунитет к вакцинному штамму вируса, разрушая его до того, как иммунная система почувствует необходимость продуцирования антител к этому штамму. Если это является верным, вакцинированные и, возможно, животные, инфицированные вирусом дикого типа, могут быть BUS A- сероотрицательными (S:P < 0.4), но не восприимчивыми (и, поэтому, иммунными) к заболеванию после повторного контакта с вирусом. Однако восприимчивость к заболеванию после повторного контакта с гомологичным вирусом дикого типа может быть зависимой от дозы вируса и от веремени, прошедшего свиней на откорме времени инфекции даже у животных с низким положительным отношением S/P. В настоящее время проводятся исследования под паронажем NPPC с целью в
ыяснения такой возможности. Группы свиней могут считаться ранее не контактировавшими с инфекцией PRRSV, если почти у всех протестированных свиней отношение S-P меньше 0,1. В ходе исследования, проведенного Epperson и Wills на 307 серологических случаях, считавшихся отрицательными по PRRSV, было обнаружено, что более 90.0% образец имело отношение S/P < 0.10 и почти ни один образец > 0.20. У 91% этих образцов средне отношение S/P было < 0,09. Персистирующе инфицированные свиньи (что достигалось экспериментальным путем) оставались положительными в плане антител как при применении ELISA, так и метода SN до тех пор, пока вирус мог обнаруживаться в заражаемых тканях (Benfield et al., Wills et al.). Поэтому до настоящего времени не имеется средств для прямого выявления сероотрицательных латентно инфицированных животных-носителей.

Существует еще один важный вопрос: имет ли место стойкий мнемонический иммунный ответ у вакцинированных или иммунных свиней на последующую ксеногенную (или гомологичную?) инфекцию? У таких свиней всегда отмечается мнемонический ответ после инфекции, если они тсановятся сероотрицательными, и постоянно ли обнаруживается такой ответ с помощью ELISA или других серологических методов анализа? У многих отрицательных по ELISA, многократно вакцинированных животных (схема 6/60) не происходило сероконверсии после ревакцинации низкой дозой ослабленного гомологичного штамма вируса (Baker et al. 1999). Было предположено, что такие животные могут оказаться иммунологически не способными ответить на поторную вакцинацию родственным вирусом. Однако сероотрицательные животные в том же исследовании продемонстрировали повышение уровня содержания антител (ELISA и SN) после ревакцинации с использованием инактивированного ксеногенного вакцинного штамма с адъювантом. Другие авторы выявили повышение уровня содержания антител у вакцинированных с помощью MLV свиней после ревакцинации живой ксеногенной вакциной (Wasmoen et al., 1998). Мнемонический иммунный ответ также наблюдали у ввцх животных после клинических вспышек PRRS. Поскольку у таких вакцинированных жых наблюдались клинические признаки, было предположено, что имело место заражение также ксеногенным штаммом. Наконец, можно рассуждать и о том, что подобная картина будет наблюдаться после клинического заболевания, вызванного ксеногенным штаммом дикого типа (острый штамм вируса PRRSV) у ранее инфицированных свиней. Однако, возникает вопрос, повторный контакт с ксеногенным штаммом дикого типа стимулирует мнемонический ответ или усиливает иммунный ответ у инфицированных животных? В этом ли заключается возможное объяснение для некоторых животных на «нестабильных» свинофермах, где отмечается высокий уровень содержания антител к PRRSV? Является ли проявление мнемонического иммунного ответа на гомологичный штамм зависимым от дозы вируса, давая нам в конечном итоге перспективу косвенного ответа типа «айсберга» касательно фактического количества вируса, циркулирующего на инфицированной свиноферме свиней на откорме свиноматками? Для обсуждения будут представлены случаи, которые указывают на то, что такая ситуация может иметь место в полевых условиях.

Мы частo используем распределение отношений S/P при анализе PRRSV с помощью метода ELISA для того, чтобы сделать вывод относительно инфекционного статуса группы тестируемых свиней. Полезными являются среднее значение и значения стандартного отклонения. Среднее значение < 0.4 указывает на отрицательный статус поголовья или, возможно, на поголовья, которое было инфицировано давно и не сталкивалось с циркулирующим вирусом в течение длительного времени или его повторным завозом на ферму. Такого типа результаты обычно также имеют незначительное стандартное отклонение ( < ± 0.4). Невысокое значение стандартного отклонения также можно наблюдать после вспышки или инфекции, распространяющейся в пределах ясельной группы/свиней на откорме/племенного поголовья, если большинство животных подверглось контакту с вирусом, и произошла сероконверсия. Незначительное стандартное отклонение отношений S/P указывает на однородность статуса группы в плане инфекции (или иммунности?) даже при большом значении отношения после вспышки. Большое стандартное отклонение (> ± 0.4 - 0.7) указывает на отсутствие однородности в пределах группы, скорее всего, из-за недавней циркуляции вируса только среди части группы (исходят из того, что большинство контактировавших животных демонстрирует иммунный ответ, обнаруживаемый с помощью метода ELISA). Распределение значений отношения S/P в группах ранее инфицированных свиней, в которых у большинства животных значения близки 0.4, но у небольшой пропорции животных значения отношения S/P >1.5 (нестабильный тип распределения) может указывать на то, что некоторые из животных контактировали с вирусом впервые (подпопуляции ранее не инфицированных животных) или , возможно, повторно контактировали с вирусом, и у них проявился мнемонический иммунный ответ (восприимчивая популяция). Представляется очевидным, что вирус циркулирует в пределах этих групп. Однако, если метод ELISA не очень чувствителен для обнаружения мнемонического иммунного ответа у подвергшихся повторному контакту животных (как в случае повторно вакцинированных животных) или контактировавших с вирусом ранее вакцинированных животных, то, судя по полученному с помощью ELISA серораспространению в инфицированных группах животных можно очень существенно недооценить степень передачи вируса, которая имеет место в данной популяции. Критическим является вопрос, которая пропорция свиней в тестируемой группе должна быть положительной до того, как будет считаться, что в ней активно циркулирует вирус и, в силу этого, возможен риск уничтожения поросят в ясельной группе или для завоза ремонтных отрицательных молодых свинок? Этот вопрос тесно связан с пропорцией вакцинированных или ранее иммунных животных, у которых после (повторного) контакта с полевым вирусом (ксеногенным по сравнению с гомологичным штаммами) произошла сероконверсия. Если после повторного контакта с вирусом у таких животных не происходит сероконверсии (ELISA или SN), то тогда придется либо отбирать образцы от более чем 30 животных в группе, либо снизить уровень приемлемости даже до 5-10% сероположительных животных. Такой вывод является следствием подозрительно низкой «чувствительности» используемого теста (уровень обнаружения ответа по сравнению с уровнем контакта с вирусом). Будет показан пример из полевых условий, который иллюстрирует эту дилемму.

Стартеги отбора образцов: затраты против уверенности

Стратегическое планирование касательно того, какие образцы следует отбирать, может в максимальной степени расширить информацию, полученную как результат затрат на серологическое тестирование. При разработке стратегии с целью диагностики или контроля над заболеванием следует рассмотреть вопрос о том, какое количество образцов и в каких группах животных следует их отбирать. В зависимости от того, какая степень достоверности требуется для принятия решения (например, вертикальная передача вируса PRRSV отсутствует), может потребоваться проведение дополнительных диагностических тестов.

Стратифицированные стратегии отбора образцов

Если проводится только простое рандомизированное тестирование групп животных, могут остаться незамеченными важные тенденции или даже выводы. Целесообразно включение важных подгрупп животных, которых следует протестировать, и регистрация образцов, полученных от таких животных, резко увеличит объем полезной информации, «купленной за доллар», использованный для диагностики. Вычленение до проведения тестирования тех вопросов, ответы на которые необходимо получить, поможет принять решение относительно того, какие группы животных следует подвергнуть тестированию и какую дополнительную информацию следует собрать на момент отбора образцов? Результаты стратифицированного отбора образцов могут выявить важные тенденции, которые дополнительно можно будет исследовать в ходе последующего тестирования. Потенциальными группами для включения в тестирование являются следующие:;

Группа племенных свиноматок Количество опоросов

Стадия супоросности Источник молодых свинок/ферма происхождения

Место/ здание / помещение;

Производственная группа: :

Время после вакцинации/ инфекция / экспозиция

Отрицательные маркеры

Используемая система содержания/ группа обработки

Отбор образцов от большинства или всех групп племенных свиноматок обеспечивает тестирование животных из различных помещений племенной фермы. Вспышки инфекции могут начинаться в одной или двух группах племенного поголовья , куда попала специфическая группа ремонтных свинок или партия спермы. Количество опоросов свиноматки является очень полезной информацией для мониторинга успешности изменений в системе организации содержания животных на ферме с целью контроля над циркуляцией PRV среди данного поголовья в рамках программы искоренения с использованием вакцинации, тестирования и выбраковки. Массовое или случайное тестирование могут указывать на дифференциальную серораспространенность согласно данным ELISA на уровне 75 - 85%, однако тестирование в зависимости от количества опоросов может выявить всех супоросных ремонтных свинок. Количество опоросов у животных с мнемоническим иммунным ответом является полезной информацией также для исследования возможных путей повторной интродукции вируса или развития восприимчивых подгрупп в пределах племенных поголовий, инфицированных вирусом PRRSV. Стадия супоросности может быть использована для лучшего отслеживания циркуляции вируса в пределах племенных поголовий, вакцинированных против PRRSV. Если свиноматок вакцинировали в период лактации, следует сконцентрироваться на серологическом тестировании племенных животных, которые должны опороситься приблизительно в период, когда вакцина индуцирует отношения S/P, которые, как ожидается, будут иметь самые низкие уровни. Потенциально следует исключить молодых свинок, вакцинированных в конце периода супоросности, если в первый раз их не вакцинировали в период изоляции или до поступления на ферму. Следует ожидать, что у таких действующих веществ будут завышенные и, в силу этого, вводящие в заблуждение значения отношений S/P. Ежеквартальное тестирование свиноматок на поздней стадии супоросности позволит установить среднее базовое отношение S/P, на основе которого можно будет судить о пропорции и величине повышенных значений S/P, которые могут сигнализировать о продолжающейся активной циркуляции вируса среди племенного поголовья. Ключом для понимания, с какой фермы были поставлены инфицированные ремонтные молодые свинки, может быть информация о степени или величине сероконверсии, оцениваемой с помощью метода ELISA, на ферме-источнике молодых свинок, на которой имела место вспышка PRRS, если ремонтные свинки поступали из разных источников. Ремонтные свинки с инфицированных ферм могут продемонстрировать более низке уровни сероконверсии или средние отношения S/P. Специальное тестирование производственных групп свиней обычно используется для выяснения мест, в которых инфекция PRRSV имеет место на данной свиноферме, а также того, может ли это играть роль в специфических проблемах, связанных с заболеванием. Тестирование ВСЕХ производственных групп свиней (перекрестный отбор образцов), которые являются кандидатами на поставку племенного поголовья, повысит уверенность в том, что сероотрицательные ремонтные свинки действительно являются свободными от вируса PRRSV. Успешность вакцинации животных, когда они находились в изоляторе до поступления на ферму, может косвенно отслежен посредством тестирования групп свинок в различные моменты времени (перспективный анализ) после вакцинации или контакта с вирусом дикого типа и последующим исследованием уровня сероконверсии/мнемонического иммунного ответа и изменений в средних для группы значениях S/P, полученных с помощью метода PRRSV ELISA . Для целей стабилизации и движения в направлении искоренения вируса PRRSV циркуляция PRRSV среди животных в группе племенного поголовья может быть обнаружена посредством оставления небольшой пропорции животных в качестве отрицательных маркеров. Результаты, полученные с помощью всех таких применений метода ELISA следует интерпретировать с осторожностью, поскольку отношение S/P не является линейным количественным показателем концентрации антител, а мнемонический иммунный ответ не всегда может проявиться после (повторного)контакта с вирусом вакцинированных или ранее инфицированных животных. Повышения достоверности результатов можно достичь путем повторного регулярного получения одинаковых результатов в разные периоды времени в конкретных группах животных в пределах одной свинофермы.

Резюме
Обнаружение антител с помощью метода ELISA является свидетельством того, что животное в прошлом контактировало с вирусом. Получаемое в данном случае отношение S/P не является непосредственным отражением содержания антител и представляет собой указание на контакт с вирусом в прошлом.
Иммунный ответ по данным ELISA теряется через 4-6 месяцев после инфекции.
Иммунный ответ по данным ELISA может не определяться в случае мнгократных вакцинаций.
Отсутствие антител по данным ELISA не коррелирует с отсутствием иммунитета.
По результатами ELISA мжно предположить, что иммунный ответ может быть усилен посредством вакцинации ксеногенным штаммом или экспериментального заражения.
У большинства действительно отрицательных по PRRSV свиней (свиньи, ранее не контактировавшие с вирусом) отношение S/P составляет < 0.1, а почти у всех - l <0.2.
Для получения ответов на специфические вопросы следует разрабатывать стратегии отбора образцов с псоледующим анализом важных подгрупп в пределах свинофермы. Многократное тестирование образцов от отдельного животного ожет в значительной степени повысить степень достоверности результатов.